MTT通常用于藥物(也包括其他處理方式如放射線照射)對體外培養(yǎng)的細胞毒性的測定以及.細胞增殖及細胞活性測定。該方法已廣泛用于一些生物活性因子的活性檢測、大規(guī)模的抗腫瘤藥物篩選、細胞毒性試驗以及腫瘤放射敏感性測定等。它的特點是靈敏度高、經濟。但是由于MTT經還原所產生的甲瓚產物不溶于水，需被溶解后才能檢測。這不僅使工作量增加，也會對實驗結果的準確性產生影響，而且溶解甲瓚的有機溶劑對實驗者也有損害。在MTT實驗步驟中要注意的是MTT有致癌性，用的時候小心,有條件hao帶那種透明的薄膜手套.配成的MTT需要無菌，MTT對菌很敏感；往96孔板加時不避光也沒有關系，畢竟時間較短，或者你不放心的時候可以把操作臺上的照明燈關掉。
 

　　MTT實驗步驟——貼壁細胞
 

　　1、收集對數(shù)期細胞，調整細胞懸液濃度，每孔加入100ul,鋪板使待測細胞調密度至1000-10000孔，(邊緣孔用無菌PBS填充)。
 

　　2.、5%CO2，37℃孵育，至細胞單層鋪滿孔底(96孔平底板),加入濃度梯度的藥物,原則上，細胞貼壁后即可加藥，或兩小時，或半天時間，但我們常在前一天下午鋪板，次日上午加藥.一般5-7個梯度,每孔100ul,設3-5個復孔.建議設5個，否則難以反應真實情況
 

　　3.、5%CO2，37℃孵育16-48小時，倒置顯微鏡下觀察。
 

　　4、每孔加入20ulMTT溶液(5mg/ml，即0.5%MTT)，繼續(xù)培養(yǎng)4h。若藥物與MTT能夠反應，可先離心后棄去培養(yǎng)液，小心用PBS沖2-3遍后，再加入含MTT的培養(yǎng)液。
 

　　5、終止培養(yǎng)，小心吸去孔內培養(yǎng)液。
 

　　6、每孔加入150ul二甲基亞砜，置搖床上低速震蕩10min，使結晶物充分溶解。在酶聯(lián)免疫檢測儀OD490nm處測量各孔的吸光值。
 

　　7、同時設置調零孔(培養(yǎng)基、MTT、二甲基亞砜)，對照孔(細胞、相同濃度的藥物溶解介質、培養(yǎng)液、MTT、二甲基亞砜)
 

　　MTT實驗步驟——懸浮細胞
 

　　1、收集對數(shù)期細胞，調節(jié)細胞懸液濃度1×106/ml，按次序將①補足的1640(無血清)培養(yǎng)基40ul ；②加Actinomycin D(有毒性)10ul用培養(yǎng)液稀釋 l?g/ml，需預試尋找jia稀釋度，1:10-1:20)；③需檢測物10ul；④細胞懸液50ul(即5×104cell/孔)，共100ul加入到96孔板(邊緣孔用無菌水填充)。每板設對照(加100?(儲存液100 1640)。
 

　　2、置37℃，5%CO2孵育16-48小時，倒置顯微鏡下觀察。
 

　　3、每孔加入10 ul MTT溶液(5 mg/ml，即0.5%MTT)，繼續(xù)培養(yǎng)4 h。(懸浮細胞推薦使用WST-1，培養(yǎng)4 h后可跳過步驟4)，直接酶聯(lián)免疫檢測儀OD570nm(630nm校準)測量各孔的吸光值)
 

　　4、離心(1000轉x10min)，小心吸掉上清，每孔加入100 ul二甲基亞砜，置搖床上低速震蕩10 min，使結晶物充分溶解。在酶聯(lián)免疫檢測儀OD570nm(630nm校準)測量各孔的吸光值。
 

　　5、同時設置調零孔(培養(yǎng)基、MTT、二甲基亞砜)，對照孔(細胞、相同濃度的藥物溶解介質、培養(yǎng)液、MTT、二甲基亞砜)，每組設定3復孔。
 

　　在MTT實驗步驟中需要注意的是MTT法只能用來檢測細胞相對數(shù)和相對活力，但不能測定細胞絕dui數(shù)。在用酶標儀檢測結果的時候，為了保證實驗結果的線性，MTT 吸光度hao在0-0.7 范圍內。配制MTT時用PBS溶解,也有人用生理鹽水配，60℃水浴助溶。